無血清細胞凍存液，含多種保護劑成分。一些保護劑，易于穿透細胞，避免細胞內(nèi)部水分子形成冰晶損傷細胞，同時另一些保護劑不能穿透細胞，但可以在冰晶形成之前，優(yōu)先結合細胞外的水分子，降低細胞外溶液的電解質(zhì)濃度，減少陽離子進入細胞的數(shù)量，為多種保護劑組合，在細胞內(nèi)外進行雙重保護，較大提高了細胞復蘇存活率。無血清細胞凍存液不含牛血清，無動物源組份。2-8℃即可穩(wěn)定保存，無需冷凍，即取即用。凍存細胞，無需程序降溫。凍存細胞復蘇率在90%以上。無血清細胞凍存液不含牛血清，無動物源組份。太原正規(guī)無血清細胞凍存液

無血清細胞凍存液：細胞凍存及復蘇是細胞培養(yǎng)技術中的重要技術，細胞凍存是細胞長期保存的重要手段。細胞凍存液，作為細胞凍存時必須使用的一種溶液，其作用是將需要凍存的細胞懸浮于凍存液，供給細胞生命代謝所必須的營養(yǎng)物質(zhì)，同時可以防止或減少冷凍冰晶對細胞的損傷作用。在現(xiàn)有技術中，一般使用培養(yǎng)基、血清和二甲亞砜(DMSO)按照一定比例混合的方法來凍存細胞，DMSO用量為10％，過低的DMSO濃度會導致凍存效果欠佳，但高濃度的DMSO有較大毒性，會對細胞體造成傷害；且傳統(tǒng)凍存液配方中所使用的血清成本高，增加動物病原污染的可能性。此外，有研究表明長期與胎牛血清接觸的細胞會對溶液介質(zhì)中的胎牛血清發(fā)生內(nèi)吞，內(nèi)吞胎牛血清后的間充質(zhì)干細胞有可能發(fā)生某些蛋白表達的變化，應用于人體后可發(fā)生異種動物蛋白引起的免疫反應，不能直接用于臨床輸注。因此，利用含有血清的凍存液凍存的細胞會給臨床使用帶來一定的風險。廈門正規(guī)無血清細胞凍存液哪家好避免細胞內(nèi)部水分子形成冰晶損傷細胞,同時另一些保護劑不能穿透細胞。

無血清細胞凍存液復蘇細胞實驗步驟：1.從冰箱里取出細胞冷凍保存管，立即放入37℃振動水浴槽中快速解凍。2.待凍存管中細胞混合液完全融化后，立即加入1ml細胞培養(yǎng)基于該冷凍管中與細胞混合，再將細胞混合液從凍存管中移入含有9ml該細胞培養(yǎng)基的試管中，混合均勻。3.離心收集培養(yǎng)細胞（參考離心條件：1,000~2,000rpm，4℃，3~5min），移去上清液。4.清洗細胞，充分洗凈殘留凍存液。5.加入適量的新鮮細胞培養(yǎng)基，使用移液管緩緩地均勻細胞混合液。適量地稀釋后，將細胞混合液移至事先準備好的培養(yǎng)瓶中。

血清血液成分（加入抗凝劑）血液凝固析出的淡黃色透明液體。如將血液自血管內(nèi)抽出，放入試管中，不加抗凝劑，則凝血反應，血液迅速凝固，形成膠凍。凝血塊收縮，其周圍所析出之淡黃色透明液體即為血清，也可于凝血后經(jīng)離心取得。在凝血過程中，纖維蛋白原轉變成纖維蛋白塊，所以血清中無纖維蛋白原，這一點是與血漿比較大的區(qū)別。而在凝血反應中，血小板釋放出許多物質(zhì)，各凝血因子也都發(fā)生了變化。這些成分都留在血清中并繼續(xù)發(fā)生變化，如凝血酶原變成凝血酶，并隨血清存放時間逐漸減少以至消失。這些也都是與血漿區(qū)別之處。但大量未參加凝血反應的物質(zhì)則與血漿基本相同。為避免抗凝劑的干擾，血液中許多化學成分的分析，都以血清為樣品。1000 rmp離心5分鐘，去除離心管中的上清液，收集細胞沉淀。

無血清細胞凍存液與含血清細胞凍存液對比：傳統(tǒng)的細胞凍存液是使用培養(yǎng)基、血清和DMSO按照一定的比例混合，其中DMSO的含量是10%，血清的含量是10%，統(tǒng)稱為含血清細胞凍存液。含血清細胞凍存液的一般的凍存方法是梯度降溫凍存法，如先將冷凍管置于4℃冰箱10分鐘，然后移至-20℃冰箱30分鐘，再移至-80℃冰箱保存16-18個小時（或隔夜），較后才移至液氮罐中進行長期的儲存。可見，含血清細胞凍存液凍存細胞時遇到的問題：1.凍存細胞時需現(xiàn)配凍存液(如購買市面上通用的含血清細胞凍存液，此步可省略)。2.需要程序降溫（4℃→-20℃→-80℃→液氮），步驟繁瑣，耗時耗力。3.含血清，細胞污染(病毒、霉菌和支原體等)的風險更高。4.血清批次、品質(zhì)間差異導致凍存液的批次間差異。5.需液氮凍存，且不能原位（如孔板）凍存。需液氮凍存，且不能原位（如孔板）凍存。廣州無血清細胞凍存液廠家

無血清細胞凍存液產(chǎn)品特色：通用型，適用于凍存各種細胞系，原代細胞。太原正規(guī)無血清細胞凍存液

復蘇方：法1）從冰箱里取出細胞冷凍保存管，立即放入37℃振動水浴槽中快速解凍。2）待凍存管中細胞混合液完全融化后，立即加入1ml細胞培養(yǎng)基于該冷凍管中與細胞混合，再將細胞混合液從凍存管中移入含有9ml該細胞培養(yǎng)基的試管中，混合均勻。3）離心收集培養(yǎng)細胞（參考離心條件：1,000~2,000rpm，4℃，3~5min），移去上清液。4）清洗細胞，充分洗凈殘留凍存液。5）加入適量的新鮮細胞培養(yǎng)基，使用移液管緩緩地均勻細胞混合液。適量地稀釋后，將細胞混合液移至事先準備好的培養(yǎng)瓶中。6）鏡檢后，研究者可根據(jù)各自方法和需要來進行細胞培養(yǎng)。太原正規(guī)無血清細胞凍存液