原代細胞與細胞系該如何選：原代細胞生長緩慢，一般認為，原代細胞培養(yǎng)的第1代和傳代到第10代以內統(tǒng)稱為原代培養(yǎng)。原代培養(yǎng)的細胞一般傳至10代左右就不容易傳下去了，細胞的生長會出現(xiàn)停滯，大部分細胞衰老死亡。但是有極少數的細胞能夠度過“危機”而繼續(xù)傳下去，這些存活的細胞一般能夠傳到40-50代，這種傳代細胞叫做細胞株。當細胞傳至50代以后又會出現(xiàn)“危機”，這時有部分細胞的遺傳物質發(fā)生了改變且?guī)в凶兊奶攸c，從而可能無限制地傳代下去，這種傳代細胞稱為細胞系。原代細胞是出了名的難養(yǎng)，對培養(yǎng)環(huán)境和實驗操作的要求更苛刻。寧波原代細胞分離試劑盒廠家批發(fā)價

選擇原代細胞的原因：長期以來，科學家多依賴永生化的細胞系來進行各種研究，但在過去十年，隨著細胞生物學的發(fā)展，細胞培養(yǎng)領域發(fā)生了巨大變化，新型的技術和培養(yǎng)試劑讓使用原代細胞作為研究對象成為可能。相比于細胞系，原代細胞更多保留了體內原始組織的生物學特征，如生長和衰老，因此通過原代細胞可建立更好的細胞疾病模型。原代細胞（Primarycells）是指來源組織，經過特定分離方法制備而成的初始細胞。原代細胞離體時間短且不經過永生化過程，其生物學特性未發(fā)生很大變化，仍保持原有的遺傳特征，可更好地反映細胞在體內的生長狀態(tài)，從而獲得與體內生理功能更接近的數據，很適合用于藥物測試、細胞分化和轉化等實驗研究。南京貴陽原代細胞分離試劑盒原代細胞作為更接近體內環(huán)境的研究模型。

原代細胞培養(yǎng)實驗室常規(guī)步驟為：1）將動物組織從機體中取出并消毒除去存留在組織上的細菌、細菌、等污染源，這些污染源將會所需培養(yǎng)的原代細胞凋亡、停止生長和繁殖直至死亡，因此整個原代細胞培養(yǎng)過程中較全在無菌狀態(tài)下進行。2）將組織塊在選定的蛋白酶溶液中浸泡20-30分鐘，通常在37C水浴里進行，而蛋白酶的選定取決于部位組織和所需細胞的類型，比如成骨、肌肉、心、肝等就需要用胰蛋白酶才能解而出單個細胞，但是對于腦組織和乳腺等軟組織，就只能用分解能力較弱的膠原蛋白酶，以免損傷分散出來的單個細胞。3）將分散而成的單個細胞置于合適的培養(yǎng)基（含有特殊細胞生長因子、添加劑以及血清，或者無血清培養(yǎng)基）中培養(yǎng)，使細胞得以生存、生長和繁殖，整個過程都是在無菌情況下操作

原代細胞傳代培養(yǎng)方法：1.當細胞達到80-90%融合時需要傳代培養(yǎng)。2.提前準備好多聚賴氨酸（PLL，貨號0403）或纖維粘連蛋白（BPF，貨號8248）包被好的培養(yǎng)瓶。3.將完全培養(yǎng)基，胰酶/EDTA消化液（T/E，貨號0103），胰胰中和液（TNS，貨號0113）和不含鈣鎂離子的DPBS（貨號0303）加熱至室溫。我們不推薦用37度水浴加熱試劑和培養(yǎng)基。4.用DPBS沖洗細胞。5.以T-75培養(yǎng)瓶為例，向培養(yǎng)瓶中加入8mlDPBS，然后加入2ml胰酶/EDTA消化液。輕輕搖動培養(yǎng)瓶保證細胞被胰酶/EDTA消化液完全覆蓋。將培養(yǎng)瓶置于37度培養(yǎng)箱1-2分鐘直到細胞變圓。在顯微鏡下觀察細胞形態(tài)變化。6.在消化期間，準備一支50ml離心管加入5ml胎牛血清（FBS，貨號0500）。大多數組織可以制備原代細胞，但生長的快慢及難易程度不一。

取材的基本要求和注意事項敘述如下：一、取材的基本要求（1）取材要注意新鮮和保鮮新鮮組織易于培養(yǎng)成功，取材時應盡量在4~6h內能制作成細胞，盡快入箱培養(yǎng)，若不能即時培養(yǎng)，應將組織浸泡于培養(yǎng)液內，于4℃存放。若組織塊較大，應在除去表面血塊、壞死組織、脂肪和結締組織后，切碎于培養(yǎng)液內4℃存放，但時間不能超過24h。對于已切碎的組織或血液、淋巴組織應加入含10%二甲基亞砜的培養(yǎng)基，按細胞凍存方式于液氮中冷凍保存。（2）取材應嚴格無菌所取標本材料應在無菌條件下進行，為了確保無菌，對所取材料若疑有污染的可能，應將所取組織在含高濃。以5ml為較低限度，否則攪拌時會產生氣泡對細胞造成傷害。石家莊原代細胞分離試劑盒廠家

它們產生的有毒物質會影響原代細胞的生長。寧波原代細胞分離試劑盒廠家批發(fā)價

原代細胞培養(yǎng)注意事項：1.收到細胞時，要鏡下觀察是否有污染情況；收到細胞的前幾天，要做好各種倍數的鏡下拍照記錄，以防細胞出現(xiàn)問題后，可以跟公司很好地溝通。2.收到細胞后，不要馬上處理。應置于培養(yǎng)箱中靜置4h以上再操作。如果不著急，可靜置過夜。3.細胞的靠前次傳代，一定要密度高一些傳代，原代細胞傳代密度低，很難長起來。建議1:2-1:3傳代。4.原代細胞傳代時（內皮細胞，貼壁為例），0.25%+0.53nM的胰酶消化，1ml消化液37度培養(yǎng)箱內消化30sec，再加入5ml培養(yǎng)基（正常消化貼壁細胞，我們使用胰酶和培養(yǎng)基的量是1:1，但是原代細胞必須用大量培養(yǎng)基中和胰酶）。5.原代細胞不建議凍存，因為凍存很容易復活不成功。如果要凍存的話，建議在P2或P3代凍存，凍存液中的血清越多越好，建議比例9（血清）:1（DMSO）。6.原代細胞復蘇時，置于37-38度水浴融化細胞，并加入10ml培養(yǎng)液（正常貼壁細胞復蘇時，也可以使用這種比例，復蘇成活率會較大提高），離心重懸鋪板。寧波原代細胞分離試劑盒廠家批發(fā)價